Φαρμακοκινηχικη μελέτη της χλωραμφενικόλης (CAP) στην τσίπουρα (Sparus aurata) και in vitro δράση κατά σημαντικών για τα ψάρια παθογόνων βακτηρίων


Δημοσιευμένα: Dec 19, 2017
Λέξεις-κλειδιά:
Φαρμακοκινητική χλωραμφενικόλη MIC Τσίπουρα
A. E. TYRPENOU (Α.Ε. ΤΥΡΠΕΝΟΥ)
G. RIGOS (Γ. ΡΗΓΟΣ)
M. YAGNISI (Μ. ΓΙΑΓΝΙΣΗ)
I. NENGAS (Ι. ΝΕΓΚΑΣ)
M. ALEXIS (Μ. ΑΛΕΞΗΣ)
Περίληψη

Στη μελέτη αυτή διερευνήθηκαν οι φαρμακοκινητικές ιδιότητες της χλωραμφενικόλης (CAP) στην τσίπουρα {Sparus aurata) και η in vitro αποτελεσματικότητα της κατά των διαφόρων βακτηριακών ασθενειών. Μετά από ενδοφλέβια χορήγηση της CAP στη δόση των 10 mg/kg/ψάρι, ο χρόνος ημίσειας ζωής της κατανομής (t1/2α ) και ο χρόνος ημίσειας ζωής της απομάκρυνσης (t1/2β) βρέθηκαν ότι είναι 1.6 και 69h, αντίστοιχα. Η διάχυση της CAP στους ιστούς της τσιπούρας ήταν μέτρια εφόσον αμφότεροι, τόσο ο φαινομενικός όγκος κατανομής (Vd(ss)) όσο καιο φαινομενικός όγκος του κεντρικού διαμερίσματος (Vc), υπολογίσθηκαν σε 1,13 και 0,90 L/kg. Η ολική σωματική απομάκρυνση (CLT) της CAP ήταν βραδεία (0,022 L/kg/h). Οι τιμή MIC της CAP σε απεσταγμένο νερό με προσθήκη 2% NaCl κατά των Vibrioanguillarum ορότυπος lb, Photobacterium damsela subsp.piscicida, V. alginolyticus και Vßuvialis υπολογίσθηκε σε 4,78μg/mL, ενώ ήταν 0,60 μg/mL για το V damsela. Η προσθήκη στο υπόστρωμα 10 mM Ca2+ και 55 mM Mg2+ έδωσε τιμές MIC 19,13μg/mL για το V alginolyticus και το V tluvialis, ενώ δεν παρατηρήθηκε κάποιο αποτέλεσμα με το V. anguillarum P. damsela subsp.Piscicida και το V. damsela. Τα αποτελέσματα αυτά έδειξαν ότι η CAP παρουσιάζει μια ικανοποιητική εικόνα κινητικής και ότι απομακρύνεται γρήγορα από τη σάρκα της τσιπούρας, ενώ οι υψηλές τιμές MIC δείχνουν μια πιθανή αναποτελεσματικότητα ενάντια σημαντικών παθογόνων βακτηρίων στα ψάρια της Μεσογείου.

Λεπτομέρειες άρθρου
  • Ενότητα
  • Research Articles
Λήψεις
Τα δεδομένα λήψης δεν είναι ακόμη διαθέσιμα.
Αναφορές
Anhalt G (1977) Residues of antibiotics in freshwater fish. Neue Folge, 55:848-854
Baggot JD (1977) The Principles of Drug Disposition in Domestic Animals. In: The basis of Veterinary Clinical Pharmacology. W.B. Saunders Co., Philadelphia, pp. 238
Bakopoulos V, Adams A, Richards RH (1995) Some biochemical properties and antibiotic sensitivities of Pasteurella piscicida isolated in Greece in comparison with strains from Japan, France and Italy. Journal of Fish Diseases, 18:1-7
Barnes AC, Hastings TS, Amyes SGB (1995) Aquaculture antibacterials are antagonized by seawater cations. Journal of Fish Diseases, 18:463-465
Cravedi JP, Heuillet JC, Wal JM (1985) Disposition and metabolism of chloramphenicol in trout. Xenobiotica, 15:115-121
I ARC 1990 International Agency for Research on Cancer. IARC Monographs on the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans. Pharmaceutical Drugs,Vol. 50. Lyon, France, pp. 415
Ishida Ν (1992) Tissue levels of oxolinic acid after oral or intravascular administration in freshwater and seawater rainbow trout. Aquaculture, 102:9-15
Liu CK, Liu YF (1993) Distribution and residues of chloramphenicol in prawns. CO A Fisheries Series, 48:10-16
Lunestad BT, Samuelsen OB (2001) Effects of sea water on the activity of antimicrobial agents used in aquaculture; implications for MIC testing. Aquaculture, 196:319-323
Mercedes A, Blanch AR (1994) A set of keys for biochemical identification of environmental Vibrio species. Journal of Applied Bacteriology, 76:79-85
MVM (1998) The Merck Veterinary Manual. S.E. Aiello and A. Mays, eds. Whitehouse Station, NJ: 1775-1779
Pursell L, Samuelsen OB, Smith Ρ (1995) Reduction in the in-vitro activity of flumequine against Aeromonas salmonicida in the presence of the concentrations of Mg2+ and Ca2+ ions found in seawater. Aquaculture, 135:245-255
Rigos G, Alexis M, Tyrpenou AE, Nengas I, Piper I, Troisi G (2002) Pharmacokinetics of oxolinic acid in gilthead sea bream, Spams aurata L. Journal of Fish Diseases, 25:1-8.
Rigos G, Tyrpenou AE, Nengas I, Yiagnisi M, Koutsodimou M, Alexis M, Troisi G (2003α) Evaluation of flumequine as a treatment agent in Mediterranean mariculture; pharmacokinetics in gilthead sea bream Spams aurata and in vitro activity against important bacterial fish pathogens. Diseases of Aquatic Organisms, 54:35-41
Rigos G, Nengas I, Tyrpenou AE, Alexis M, Troisi G (2003b) Pharmacokinetics of Oxytetracycline in gilthead sea bream, Spams aurata L. Aquaculture, 221:75-83
Ritschel WA (1986) Handbook of Basic Pharmacokinetics including clinical applications. 3rd ed, Drug Intelligence Publications Inc., Hamilton, pp. 544
Robert R, Miner P, Nicolas JL (1996) Mortality control of scallop larvae in the hatchery. Aquaculture International, 4:305-313
Skare JU, Hastein T, Froslie A (1974) Determination of residues of chloramphenicol in rainbow trout (Salmo gairdneri) and Atlantic salmon (Salmo salar). Nord Veterinary Medicine, 26:108-115
Smith P, Hiney M, Samuelsen OB (1994) Bacterial resistance to antimicrobial agents used in fish farming; a critical evaluation on method and meaning. Annual Review of Fish Diseases, 4:273-313
Stamm JM (1989) In vitro resistance by fish pathogens to aquacultural antibacterials, including the quinolones difloxacin (A-56619) and sarafloxacin (A-56620). Journal of Aquatic Animal Health, 1:135-141
Stegeman JJ (1989) Cytochrome P-450 forms in fish: catalytic, immunological and sequence similarities. Xenobiotica, 19:1093-1110
Torkildsen L, Samuelsen OB, Lunestad, BT, Bergh, Ο (2000) Minimum inhibitory concentrations of chloramphenicol, florfenicol, trimethoprim/sulfadiazine and flumequine in seawater of bacteria associated with scallops (Pecten maximus)larvae. Aquaculture, 185:1-12
Tyrpenou A, Rigos G, Athanassopoulou F (2002) Determination of chloramphenicol residues in gilthead sea bream (Spams aurata L.) tissues by HPLC- PDA. Journal of Liquid Chromatography and Related Technologies, 25:655-663
Τα περισσότερο διαβασμένα άρθρα του ίδιου συγγραφέα(s)