Αξιολόγηση της επίδρασης διαφορετικών αναισθησιολογικών πρωτοκόλλων στη γενική αίματος και στις βιοχημικές παραμέτρους σε αρουραίους Wistar

PDF (English)
DOI: https://doi.org/10.12681/jhvms.16057
Λέξεις-κλειδιά:
Αναισθησία Επίμυες Αιματολογικές παράμετροι
P. P. LELOVAS
Center of Clinical, Experimental Surgery and Translational Research, Laboratory Animal Unit, Biomedical Research Foundation, Academy of Athens
M. S. STASINOPOULOU
Center of Clinical, Experimental Surgery and Translational Research, Laboratory Animal Unit, Biomedical Research Foundation, Academy of Athens
E. G. BALAFAS
Center of Clinical, Experimental Surgery and Translational Research, Laboratory Animal Unit, Biomedical Research Foundation, Academy of Athens
M. A. NIKITA
Center of Clinical, Experimental Surgery and Translational Research, Laboratory Animal Unit, Biomedical Research Foundation, Academy of Athens
N. T. SISKOS
Center of Clinical, Experimental Surgery and Translational Research, Laboratory Animal Unit, Biomedical Research Foundation, Academy of Athens; Laboratory of Anatomy, Histology and Embryology, Veterinary School, Faculty of Health Sciences, Aristotle University of Thessaloniki
N. G. KOSTOMITSOPOULOS
Center of Clinical, Experimental Surgery and Translational Research, Laboratory Animal Unit, Biomedical Research Foundation, Academy of Athens
Περίληψη
Ο στόχος της παρούσας μελέτης ήταν να προσδιοριστεί η επίδραση τριών διαφορετικών πρωτοκόλλων αναισθησίας στις αιματολογικές και βιοχημικές παραμέτρους. Για το σκοπό αυτό χρησιμοποιήθηκαν δεκαοχτώ θηλυκοί επίμυες Wistar (WI HsdOla) ηλικίας 3 μηνών, που ζύγιζαν 197,09 ± 7,39 g. Η αρχική αιμοληψία πραγματοποιήθηκε σε όλα τα ζώα από την πλάγια κοκκυγική φλέβα για την αξιολόγηση των επιπέδων γλυκόζης. Τα ζώα στη συνέχεια χωρίστηκαν τυχαία σε 3 ομάδες ώστε να λάβουν ένα από τα τρία διαφορετικά αναισθητικά πρωτόκολλα: δεξμεδετομιδίνη/κεταμίνη ενδομυϊκά (0,25 mg/kg και 50 mg/kg αντίστοιχα), βαμβάκι εμποτισμένο με 0,2 ml ισοφλουρανίου τοποθετημένο μέσα σε σύριγγα, ή ισοφλουράνιο χορηγούμενο με αναισθητική μηχανή (5% για εισαγωγή στην αναισθησία και 2-3% για συντήρηση , ροή οξυγόνου 1 L/min). Συλλέχθηκαν δείγματα αίματος από την οπίσθια κοίλη φλέβα για τη γενική αίματος και τις βιοχημικές αναλύσεις, ενώ συλλέχθηκαν ο πνεύμονας και το ήπαρ για ιστολογική αξιολόγηση. Η σύγκριση μεταξύ των ομάδων, όσον αφορά τις αιματολογικές παραμέτρους κατέδειξε στατιστικά σημαντικές διαφορές στις τιμές των ερυθρών αιμοσφαιρίων, του αιματοκρίτη και της αιμοσφαιρίνης με τις χαμηλότερες τιμές να παρατηρούνται στην ομάδα με τη χρήση αναισθητικής μηχανής. Η σύγκριση εντός της ομάδας κατέδειξε στατιστικά σημαντικές διαφορές στα επίπεδα γλυκόζης και για τις τρεις ομάδες. Δεν παρατηρήθηκαν ενδείξεις αλλοιώσεων σχετικών με φλεγμονή, εκφυλιστική νεοπλασία ή τοξικότητα κατά την ιστολογική αξιολόγηση του πνεύμονα και του ήπατος.
Λεπτομέρειες άρθρου
  • Ενότητα
  • Research Articles
Creative Commons License

Αυτή η εργασία είναι αδειοδοτημένη υπό το CC Αναφορά Δημιουργού – Μη Εμπορική Χρήση 4.0.

Οι συγγραφείς των άρθρων που δημοσιεύονται στο περιοδικό διατηρούν τα δικαιώματα πνευματικής ιδιοκτησίας επί των άρθρων τους, δίνοντας στο περιοδικό το δικαίωμα της πρώτης δημοσίευσης.

Άρθρα που δημοσιεύονται στο περιοδικό διατίθενται με άδεια Creative Commons 4.0 Non Commercial και σύμφωνα με την άδεια μπορούν να χρησιμοποιούνται ελεύθερα, με αναφορά στο/στη συγγραφέα και στην πρώτη δημοσίευση για μη κερδοσκοπικούς σκοπούς.

Οι συγγραφείς μπορούν να καταθέσουν το άρθρο σε ιδρυματικό ή άλλο αποθετήριο ή/και να το δημοσιεύσουν σε άλλη έκδοση, με υποχρεωτική την αναφορά πρώτης δημοσίευσης στο J Hellenic Vet Med Soc

Οι συγγραφείς ενθαρρύνονται να καταθέσουν σε αποθετήριο ή να δημοσιεύσουν την εργασία τους στο διαδίκτυο πριν ή κατά τη διαδικασία υποβολής και αξιολόγησής της.

Λήψεις
Τα δεδομένα λήψης δεν είναι ακόμη διαθέσιμα.
Αναφορές
Anonymous.(2012). Isoflurane [MAK Value Documentation, 1996]. The MAK Collection for Occupational Health and Safety. pp 128–140.
Anonymous (1998) Baseline Hematology and Clinical Chemistry Values for Charles River Wistar Rats (CRL: (WI)BR) as a function of Sex and Age. Technical bulletin, Charles River Laboratories, Wilmington.
Balafas E, Papastefanou A, Katsimpoulas M, Kostomitsopoulos N (2011) A low cost face mask for inhalation anaesthesia in rats. Scand J Lab Anim Sci 38:111-115.
Bihun G, Bauck L (2004) Basic Anatomy, Physiology, Husbandry and Clinical Techniques. Ferrets, Rabbits and Rodents. In: Animal Medicine and Surgery. 2nd ed, Elsevier, St Louis, Misouri:pp 286-298.
Brown ET, Umino Y, Loi T, Solessio E, Barlow R (2005) Anesthesia can cause sustained hyperglycemia in C57/BL6J mice. Vis Neurosci. 22:615-618.
Brunson DB (1997) Pharmacology of Inhalation Anesthetics. In: Anesthesia and anelgesia in laboratory animals. Academic Press, San Diego, California: pp 29-41.
Bush BM (1991) Part 1 haematology. In: Interpretation of laboratory results for small animal clinicians. Oxford Blackwell Scientific publication: pp 31-219.
Clayton JA, Collins FS (2014) Policy: NIH to balance sex in cell and animal studies. Nature 509:282-283.
Deckardt K, Weber I, Kaspers U, Hellwig J, Tennekes H, van Ravenzwaay B (2007) The effects of inhalation anaesthetics on common clinical pathology parameters in laboratory rats. Food Chem Toxicol 45:1709-1718.
Fish RE (1997) Pharmacology of Injectable Anesthetics. In: Anesthesia and analgesia in laboratory animals. Academic Press, San Diego, California: pp 1-28.
Gärtner K, Büttner D, Döhler K, Friedel R, Lindena J, Trautschold I (1980) Stress response of rats to handling and experimental procedures. Lab Anim. 14:267-74.
Gonullu E, Ozkardesler S, Kume T, Duru LS, Akan M, Guneli ME, Ergur BU, Meseri R, Dora O (2014) Comparison of the effects of dexmedetomidine administered at two different times on renal ischemia/reperfusion injury in rats. Braz J Anesthesiol 64:152-8.
Gothelf A, Hojman P, Gehl J (2009) Change in Hemoglobin Levels due to Anesthesia in Mice: An Important Confounder in Studies on Hematopoietic Drugs. Biol Proced Online 11:325-330.
Kharasch ED, Frink EJ Jr, Zager R, Bowdle TA, Artru A, Nogami WM (1997) Assessment of low-flow sevoflurane and isoflurane effects on renal function using sensitive markers of tubular toxicity. Anesthesiology 86:1238-1253.
Levine BS. (1995). Animal Clinical Pathology. In CRC Handbook of Toxicology. Boca Raton, FL: CRC Press pp 517-537.
Lugo-Roman LA, Rico PJ, Sturdivant R, Burks R, Settle TL (2009) Effects of serial anesthesia using ketamine or ketamine/medetomidine on hematology and serum biochemistry values in rhesus macaques ( Macaca Mulatta). J Med Primatol 39:41-49.
Marini RP, Jackson LR, Esteves MI, Andrutis KA, Goslant CM, Fox JG (1994) Effect of isoflurane on hematologic variables in ferfor rets. Am J Vet Res 55:1479-83.
Md Said S, Abiola O (2014) Haematological profile shows that Inbred Sprague Dawley rats have exceptional promise for use in biomedical and pharmacological studies. Asian Journal of Biomedical and Pharmaceutical Sciences 4:33-37.
Nishiyama T (2013) Effects of repeat exposure to inhalation anesthetics on liver and renal function. J Anaesthesiol Clin Pharmacol 29:83-87.
Nishiyama T, Yokoyama T, Hanaoka K (1998) Liver and renal function after repeated sevoflurane or isoflurane anaesthesia. Can J Anaesth 45:789-793.
Prendergast BJ, Onishi KG, Zucker I (2014) Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neurosci Biobehav Rev 40:1-5.
Risling TE, Caulkett NA, Florence D (2012) Open-drop anesthesia for small laboratory animals. Can Vet J 53:299-302.
Steffey EP, Gillespie JR., Berry JD, Eger EI, Schalm OW (1976) Effect of halothane and halothane-nitrous oxide on haematocrit and plasma protein concentration in dogs and monkeys. Am J Vet Res 37:959-62.
Tabata H, Kitamura T, Nagamatsu N (1998) Comparison of effects of restraint, cage transportation, anaesthesia and repeated bleeding on plasma glucose levels between mice and rats. Lab Anim 32:143-148.
Tanaka K, Kawano T, Tomino T, Kawano H, Okada T, Oshita S, Takahashi A, Nakaya Y (2009) Mechanisms of impaired glucose tolerance and insulin secretion during isoflurane anesthesia. Anesthesiology 111:1044-1051.
Tanaka T, Nabatame H, Tanifuji Y (2005) Insulin secretion and glucose utilization are impaired under general anesthesia with sevoflurane as well as isoflurane in a concentration-independent manner. J Anesth 19:277-281.
Taylor DK, Mook DM (2009) Isoflurane Waste Anesthetic Gas Concentrations Associated with the Open-Drop Method. J Am Assoc Lab Anim Sci 48:61-64.
Walter GL, Smith GS, Walker RM (2013) Interpretation of Clinical Pathology Results in Non-Clinical Toxicology Testing. In: Haschek and Rousseaux’s Handbook of Toxicologic Pathology. 3rd ed, 2nd vol, Elsevier, Amsterdam: pp 853-892.
Wilson DV, Evans AT, Carpenter RA, Mullineaux DR (2004) The effect of four anesthetic protocols on splenic size in dogs. Vet Anaesth Analg. 31:102-108.
Wixson SK, Smiller KL (1997) Anesthesia and analgesia in rodents. In: Anesthesia and analgesia in laboratory animals. Academic Press, San Diego, California: pp 165-204.
Zuurbier, CJ, Keijzers PJ, Koeman A, Van Wezel HB, Hollmann MW (2008) Anesthesia’s effects on plasma glucose and insulin and cardiac hexokinase at similar hemodynamics and without major surgical stress in fed rats. Anesth Analg 106:135-142.