Κατάψυξη σπέρματος κουνελιού μετά την προσθήκη γλυκερόλης και dimethylsulfoxide στο αραιωτικό μέσο


Δημοσιευμένα: Jan 31, 2018
Λέξεις-κλειδιά:
κουνέλι σπέρμα κατάψυξη DMSO Γλυκερόλη
S. SAMOUILIDIS (Σ. ΣΑΜΟΥΗΛΙΔΗΣ)
K. SAOULIDIS (Κ. ΣΑΟΥΛΙΔΗΣ)
A. FOUKOS (Α. ΦΟΥΚΟΣ)
P. YPSILANTIS (Π. ΥΨΗΛΑΝΤΗΣ)
A. DEMERTZIS (Α. ΔΕΜΕΡΤΖΗΣ)
A. P. SBIRAKI (Α.Π. ΣΜΠΙΡΑΚΗ)
Περίληψη

Κατά τη διεξαγωγή αυτής της έρευνας, καταψύχθηκε σπέρμα 10 κουνελιών μετά από την αραίωση του σε δυο διαφορετικά αραιωτικά μέσα, τα Α και Β. Το αραιωτικό Α αποτελούνταν από Tris-buffer στο οποίο προστέθηκε κρόκος αυγοΰ σε ποσοστό 20% και γλυκερόλη σε ποσοστό 3%, ενώ το αραιωτικό Β είχε την ίδια σύνθεση με το Α αλλά επιπλέον και dimethylsulfoxide (DMSO). Με το σπέρμα που παρουσίασε την υψηλότερη κινητικότητα σπερματοζωαρίων μετά την κατάψυξη / απόψυξη του και στα δυο αραιωτικά, διενεργήθηκε τεχνητή σπερματέγχυση σε δυο αντίστοιχες ομάδες (Ι και Π) των 20 κουνελών. Η μέση κινητικότητα των σπερματοζωαρίων του νωπού σπέρματος (77%) μειώθηκε σημαντικά (Ρ< 0.05) μετά την κατάψυξη του τόσο στο αραιωτικό Α (47%) όσο και στο αραιωτικό Β (54%). Η κινητικότητα των κατεψυγμένων / αποψυγμένων σπερματοζωαρίων στο αραιωτικό Β ήταν σημαντικά υψηλότερη (Ρ< 0.05) από εκείνη που είχαν στο αραιωτικό Α. Το ποσοστό τοκετών των ζώων της ομάδας II (60%) παρουσίασε αύξηση σε σχέση με εκείνο των ζώων της ομάδας Ι (50%), αλλά αυτή δεν ήταν σημαντική (Ρ>0.05). Επίσης, δεν παρατηρήθηκε σημαντική διαφορά (Ρ> 0.05) μεταξύ των μέσων όρων του μεγέθους των τοκετοομάδων της ομάδας Ι (6,8±1,7) και της ομάδας II(7,0±1,9). Τα συμπεράσματα αυτής της έρευνας συνοψίζονται στο ότι η κατάψυξη σπέρματος κουνελιού σε αραιωτικόπου περιέχει συνδυασμό των κρυοπροστατευτικών ουσιών DMSO και γλυκερόλης σε αναλογία 3% από το καθένα, έχει ως αποτέλεσμα τη σημαντική βελτίωση της κινητικότητας του κατεψυγμένου / αποψυγμένου σπέρματος, ενώ δεν έχει σημαντική επίδραση στη γονιμότητα του οΰτε και στο μέγεθος των τοκετοομάδων.

Λεπτομέρειες άρθρου
  • Ενότητα
  • Research Articles
Λήψεις
Τα δεδομένα λήψης δεν είναι ακόμη διαθέσιμα.
Αναφορές
Maurer RR, Stranzinger GF, Paufler SK. Embryonic development in rabbits after insemination with spermatozoa stored at 37,5 or -196 °C for various periods. J Reprod Fertil 1976,48: 43-49
Weitze KF. Untersuchungen zur Tiefgefrierkonservierung von Kaninchensperma. Tier(rztlichen Hochschule, Hannover, Habilitationsschrift 1977
Hanada A, Nagase H. Cryopreservative effects of some amides on rabbit spermatozoa. J Reprod Fertil 1980,60:247-252
Arriola J. Interaction of formaldehyde and of sodium and triethanolamine lauryl sulfate on the motility and fertilizing ability of rabbit and bull spermatozoa frozen in egg yolk and milk extenders. Ph.D. Thesis, Cornell University, Ithaca, New York 1982
Weitze KF, Scharnholz A, Bader H. Tiefgefrierkonservierung von Kaninchen-sperma. II. Einflus der Langzeitlagerung auf die Befruchtungsfahiqhkeit. Zuchthyg 1982,17:172-177
Chen Y, Yang X, Foote RH. Timed breeding of rabbits with fresh and frozen-thawed semen and evidence of acrosome alteration following freezing and thawing. Anim Reprod Sci 1989,18: 35-41
Bamba K. Freezing rabbit semen by the use of BF5 diluent. Lab Anim 1990,24:172-175
Chen Y, Foote RH. Survival of rabbit spermatozoa frozen and thawed at different rates with and without seeding. Anim Reprod Sci 1994,35:131-143
Σφαιρόπουλος Α. Κονικλοτροφία. Υπηρεσία Δημοσιευμάτων ΑΠΘ, Θεσσαλονίκη, 1991, σ. 55
Lovelock JE. Biophysical aspects of the freezing of living cells. In "The Preservation and Transportation of Normal Tissues" (edited by Wolstenholme GEW and Cameron J). Edinburgh, 1953, p. 131-138
Nagase H, Tomizuka T. Studies on the permeability of sperm cell membrane. I. Sperm survival in hypertonic solution of polyols. Jap J Zootech Sci Suppl 1969,4: 2-3
Polge C, Smith AU, Parkes AS. Revival of spermatozoa after vitrification and dehydration at low temperatures . Nature, London, 1949: 666-671
Smith AU, Polge C. Survival of spermatozoa at low temperatures. Nature, London, 1950,166: 668-690
Smith AU. Biological effect of freezing and supercooling. Williams & Wilkins, Baltimore, 1961, p. 14-16, 34, 373
Sawada Y, Chang MC. Motility and fertilizing capacity of rabbit spermatozoa after freezing in a medium containing dimethylsulphoxide. Fertil Steril 1964,15: 222-229
Lovelock JE, Bishop MWH. Prevention of freezing damage to living cells by dimethylsulphoxide. Nature (London) 1959, 183:1394-1399
Stranzinger GF, Maurer RR, Paufler SK. Fertility of frozen rabbit semen. J Reprod Fertil 1971,24:111-113
Götze VG, Paufler S. Besamungsergebnisse und pr(natale Mortalität nach Verwendung von Flüssig und Tiefgefriersperma beim Kaninchen bei normaler Ovulationsauslösung und Superovulation. Zuchthyg 1976,11:109-174
Parrish JJ, Foote RH. Fertility of cooled and frozen rabbit sperm measured by competitive fertilization. Biol Reprod 1986,35: 253-257
Σαμουηλίδης Σ, Σαράτσης Φ, Υψηλάντης Π, Αδαμοπούλου Β. Κατάψυξη σπέρματος κουνελιού. Δελτίον Ελλ Κτην Εταιρείας 1996,47 (2): 124-128
Τα περισσότερο διαβασμένα άρθρα του ίδιου συγγραφέα(s)